Ta študija dokazuje, da je s koreninami povezana gliva Kosakonia oryziphila NP19, izolirana iz riževih korenin, obetaven biopesticid, ki spodbuja rast rastlin, in biokemijsko sredstvo za zatiranje riževe pesticide. Poskusi in vitro so bili izvedeni na svežih listih sadik aromatičnega riža Khao Dawk Mali 105 (KDML105). Rezultati so pokazali, da NP19 učinkovito zavira kalitev konidij glive, ki povzroča riževo pesticid. Glivična okužba je bila zavrta v treh različnih pogojih tretiranja: inokulacija riža z NP19 in glivičnimi konidijami; sočasna inokulacija listov z NP19 in glivičnimi konidijami; ter inokulacija listov z glivičnimi konidijami, ki ji je sledila obdelava z NP19 30 ur kasneje. Poleg tega je NP19 zmanjšal rast glivičnih hif za 9,9–53,4 %. V poskusih v lončkih je NP19 povečal aktivnost peroksidaze (POD) in superoksid dismutaze (SOD) za 6,1 % do 63,0 % oziroma 3,0 % do 67,7 %, kar kaže na okrepljene obrambne mehanizme rastlin. V primerjavi z neokuženimi kontrolami z NP19 so rastline riža, okužene z NP19, pokazale povečanje vsebnosti pigmentov za 0,3 %–24,7 %, števila polnih zrn na metlico za 4,1 %, pridelka polnih zrn za 26,3 %, masnega indeksa pridelka za 34,4 % in vsebnosti aromatske spojine 2-acetil-1-pirolina (2AP) za 10,1 %. Pri rastlinah riža, okuženih z NP19 in pegavostno boleznijo, se je povečanje povečalo za 0,2 %–49,2 %, 4,6 %, 9,1 %, 54,4 % oziroma 7,5 %. Terenski poskusi so pokazali, da so rastline riža, kolonizirane in/ali inokulirane z NP19, pokazale povečanje števila polnih zrn na metlico za 15,1–27,2 %, pridelka polnega zrna za 103,6–119,8 % in vsebnosti 2AP za 18,0–35,8 %. Te rastline riža so pokazale tudi višjo aktivnost SOD (6,9–29,5 %) v primerjavi z rastlinami riža, okuženimi z eksplozijo, ki niso bile inokulirane z NP19. Foliarna aplikacija NP19 po okužbi je upočasnila napredovanje lezij. Tako se je izkazalo, da je K. oryziphila NP19 potencialni biološki agens za spodbujanje rasti rastlin in biopesticid za nadzor riževe eksplozije.
Vendar pa na učinkovitost fungicidov vpliva veliko dejavnikov, vključno s formulacijo, časom in načinom uporabe, resnostjo bolezni, učinkovitostjo sistemov za napovedovanje bolezni in pojavom sevov, odpornih na fungicide. Poleg tega lahko uporaba kemičnih fungicidov povzroči preostalo toksičnost v okolju in predstavlja tveganje za zdravje uporabnikov.
V poskusu v loncu so bila riževa semena površinsko sterilizirana in kalila, kot je opisano zgoraj. Nato so bila zasejana s K. oryziphila NP19 in presajena v pladnje za sadike. Sadike so bile 30 dni inkubirane, da so riževe sadike vzklile. Sadike so bile nato presajene v lončke. Med presajanjem so bile riževe rastline pognojene, da bi jih pripravili na okužbo z glivico, ki povzroča riževo pegavost, in da bi preizkusili njihovo odpornost.
V poljskem poskusu so kaljena semena, okužena z Aspergillus oryzae NP19, obdelali z zgoraj opisano metodo in razdelili v dve skupini: semena, okužena z Aspergillus oryzae NP19 (RS), in neokužena semena (US). Kaljena semena so posadili v pladnje s sterilizirano zemljo (mešanica zemlje, zažganih riževih luščin in gnoja v razmerju 7:2:1 po teži) in inkubirali 30 dni.
Konidijska suspenzija K. oryziphila je bila dodana rižu R in po 30 urah inkubacije je bilo na isto mesto dodanih 2 μl K. oryziphila NP19. Vse petrijevke so bile 30 ur inkubirane pri 25 °C v temi in nato inkubirane pod stalno osvetlitvijo. Vsaka skupina je bila replicirana trikrat. Po 72 urah inkubacije so bili rastlinski rezini pregledani in podvrženi vrstičnemu elektronskemu mikroskopu. Na kratko, rastlinski rezini so bili fiksirani v fosfatno pufrirani fiziološki raztopini, ki je vsebovala 2,5 % (v/v) glutaraldehida, in dehidrirani v seriji etanolnih raztopin. Vzorce so posušili do kritičnih točk z ogljikovim dioksidom, nato pa jih prevlekli z zlatom in opazovali pod vrstičnim elektronskim mikroskopom 15 minut.
Čas objave: 13. oktober 2025